Bolsista: ISABELLE DA SILVA OLIVEIRA SANTOS
Orientador(a): FERNANDA MARCICANO BURLANDY
Resumo: Segundo dados da Organização Mundial da Saúde (OMS), as doenças diarreicas são responsáveis por cerca de 1.7 bilhão de casos e causam, anualmente, cerca de 525.000 mortes de crianças com menos de cinco anos, sendo a segunda principal causa de mortalidade na população infantil. Diversos estudos demonstram que os rotavírus A (RVA) são os principais agentes virais associados a Doença Diarréica Aguda (DDA) seguidos pelos norovírus e os mastadenovirus (HAdV). A vacinação de rotina de lactentes contra os rotavírus foi implementada em 95 países em abril de 2018. Após a introdução da vacina, foi observada uma significativa redução nos casos de doença diarreica aguda associada a esse agente viral em muitos países, inclusive no Brasil. Embora a incidência de gastroenterite aguda seja maior entre crianças pequenas, casos esporádicos e surtos geralmente envolvem pessoas de todas as idades e, dependendo do cenário e da população, até 50% dos casos notificados podem permanecer sem diagnóstico. Nesse contexto surgem evidências crescentes da importância de vírus emergentes tais como sapovírus, bocavirus e astrovirus na etiologia mundial da DDA. Portanto, faz-se importante ampliar a investigação laboratorial da DDA associada a outros patógenos virais. Neste contexto, o projeto propõe, a partir das amostras clínicas oriundas de casos de gastroenterites agudas recebidas no Laboratório de Referência Regional de Rotaviroses, para a vigilância das diarréias agudas, e com resultado negativo para RVA e norovirus, determinar a ocorrência de vírus gastroentéricos emergentes tais como sapovirus, bocavirus, aichivirus e novos astrovirus no Brasil entre os anos de 2023 e 2024. Para tal amostras de fezes com resultado negativo prévio para rotavírus e norovírus, provenientes de 11 estados do Brasil que figuram dentro da abrangência do LRRR (RN, PE, SE, AL, PB, BA, RJ, MG, ES, RS, SC), serão processadas e preparadas suspensões fecais a 10% em tampão Tris-HCl Ca2+ 0,01M pH 7,2. O material genético viral será purificado e concentrado utilizando o kit “QIAamp Viral Mini Kit” e o extrator QIAcube(Marca Registrada) , de acordo com as instruções do fabricante. A detecção e quantificação viral será realizada utilizando-se o ensaio RT-qPCR ou qPCR no sistema 7500 Real Time PCR System(Marca Registrada) (Applied Biosystems, USA) tendo como alvo regiões específicas dos diferentes vírus estudados, de acordo com protocolos descritos previamente e validados no laboratório. A caracterização molecular será realizada através da amplificação parcial de regiões específicas do genoma viral, os amplicons resultantes serão purificados com o kit QIAquick PCR Purificação (QIAGEN, Valencia,CA) e o sequenciamento nucleotídico parcial será feito utilizando kit ABI Prism BigDye Terminator v3.1 (Marca Registrada) na Plataforma do Sequenciamento de DNA PDTIS /FIOCRUZ.